sábado, 19 de noviembre de 2011

TECNICAS MACROSCOPICAS COPROPARASITOSCOPICAS "TAMIZADO"


TÉCNICAS MACROSCÓPICAS COPROPARASITOSCOPICAS “TAMIZADO”
OBJETIVO:
Aprender a realizar la técnica de tamizado con el fin de localizar parasitos en heces fecales, todo ello enfocado en el aprendizaje de helmintos que hemos estado estudiando durante las clases pasadas.
FUNDAMENTO:
La técnica de tamizado permite observar directamente las características morfológicas de los parásitos adultos, enteros o fraccionados. Tal es el caso de los helmintos.
Después de la expulsión espontánea de proglótidos, estos se pueden recuperar por medio de la técnica de TAMIZADO en heces expulsadas durante 24horas. En caso de obtenerse proglótidos, deben comprimirse entre dos portaobjetos y observarlos a contraluz o en un microscopio.
Mediante el TAMIZADO de las heces también es posible recuperar el escólex, sobre todo después de los tratamientos, el cual se observará bajo el microscopio para determinar sus características morfológicas.
MATERIAL:
• Coladera de tamiz fino
• Abate lenguas
• Caja peri
• Pinzas
SUSTANCIAS:
• Muestra de heces fecales
• Solución salina
PROCEDIMIENTO
1) Colocar pequeñas cantidades de materia fecal en la coladera con ayuda del abate lenguas.
2) Dispersar la muestra con el abate lenguas y agregarle agua hasta lograr un tamizado lo más limpio posibles.
3) Revisar cuidadosamente las partículas de las heces que hayan quedado en la coladera.
4) Los parásitos encontrados colocarlos en una caja petri con solución salina
5) Se identifica la parte del parasito o el parasito completo

6) Se reporta el género y la especie del parasito o parte del parasito.
RESULTADOS




CONCLUSIÓN
Macroscópicamente encontramos parásitos pero ya al observarlos en el microscopio logramos observar fibras y residuos de alimento ya que no se podía apreciar bien la imagen.

COPROPARASITOSCOPICO DIRECTO


COPROPARASITOSCOPICO DIRECTO

Método directo: frotis

Fundamento:

Este método solo sirve para evidenciar la presencia de un determinado parasito, y se trata de un método cualitativo que no permite conocer el numero de formas larvarias que hay por cada gramo de heces y por lo tanto la carga parasitaria.

Frotis en fresco:

Es un método rápido pero poco seguro. Tiene posibilidad de falsos negativos, por lo que es necesario repetir. Permite observar la motilidad de microorganismos: amibas y otros flagelos. Detecta quistes, huevos de helmintos. Precisa concentración.

Muestra biológica:

Heces fecales frescas

Material:                                                      Sustancias:

-Portaobjetos                                              -sol. Fisiológica al 0.9%

-Cubreobjetos                                             -sol. De yodo

-Pipeta Pasteur

-Vaso de precipitado

- Microscopio

Procedimiento:

1.- sobre un portaobjetos bien limpio se coloca una pequeña porción de materia fecal.
2.-  se le agrega una gota de solución fisiológica.

3.- se coloca el cubreobjetos.

4.- en otro portaobjetos limpio se repite el mismo procedimiento pero ahora se tiñe con la tinción de yodo.

Es importante que el frotis no sean densos, sino transparentes y que se haga la observación con diferentes muestras.

5.- se observa al microscopio.

Resultados:
EN ESTA SEGUNDA MUESTRA SE ENCONTRARON FIBRAS IGUALMENTE DE ALIMENTOS.
EN ESTA OTRO SE PUEDE OBSERVAR ALGUNOS RESIDUOS DE ALIMENTOS Y GRASAS COMO SE NOS EXPLICO PARA IDENTIFICARLOS COMO TAL.


Conclusión:
Llegamos a la conclusión de que el método directo es fácil y rápido pero en algunos casos puede variar el resultado.